Біофункціоналізація нанокомпозитів на основі магнетиту, модифікованого мезо-2,3-димеркаптосукциновою кислотою

Статтю присвячено синтезу магніточутливих нанокомпозитів на основі магнетиту, модифікованого мезо-2,3 димеркаптосукциновою кислотою з іммобілізованими біологічно активними компонентами (нормальним імуноглобуліном людини (Ig), 2-меркаптонікотиновою кислотою (2-МНК) та дослідженню фізико-хімічних характеристик наноколоїдних магнітних суспензій на їх основі. Розроблено методику хімічного модифікування поверхні однодоменного магнетиту тіольними групами. Біофункціоналізацію одержаного нанокомпозита нормальним імуноглобуліном людини проведено із використанням гетеробіфункціонального реагенту sulfo-SMCC. Здійснено іммобілізацію модельної біологічно активної сполуки 2-МНК на поверхню магніточутливого нанокомпозита за реакцією тіол-дисульфідного обміну із використанням дипіридилдисульфіду. Методами РФС і ІЧ-Фур’є-спектроскопії доведено наявність дисульфідних містків та SН-груп на модифікованій поверхні, визначено кількісний вміст тіольних груп.

Рік видання: 
2012
Номер: 
1
УДК: 
544.72.02
С. 149—154. Іл. 6. Табл. 1. Бібліогр.: 16 назв.
Література: 

1. Hao Qian, Chun Jiao Li, Zhi Yong Lin, Ying Xue Zhang. Using Thiophilic Magnetic Beads in Purification of Antibodies from Human Serum // Colloids and Surfaces. B: Biointerfaces. — 2010. — 75. — P. 342—348.
2. Berensmeier S. Magnetic Particles for the Separation and Purification of Nucleic Acids // Appl. Microbiol. Biotechnol. — 2006. — 73. — P. 495.
3. Jun Y.-W., Huh Y.-M., Choi J. et al. Nanoscale Size Effect of Magnetic Nanocrystals and Their Utilization for Cancer Diagnosis via Magnetic Resonance Imaging // J. Am. Chem. Soc. — 2005. — 127. — P. 5732—5733.
4. Fauconnier N., Pons J.N., Roger J. and A. Bee Thiolation of Maghemite Nanoparticles by Dimercaptosuccinic Acid // J. of Colloid and Interface Science. — 1997. — 194. — P. 427—433.
5. Zhang S., Bian Z., Gub C. et al. Preparation of Antihuman Cardiac Troponin I Immunomagnetic Nanoparticles and Biological Activity Assays // Colloids and Surfaces. B: Biointerfaces. — 2007. — 55. — P. 143—148.
6. Silva L., Kuckelhaus S., Guedes M. et al. Kinetic of Magnetic Nanoparticles Uptake Evaluated by Morphometry of Mice Peritoneal Cells // J. of Magnetism and Magnetic Materials. — 2005. — 289. — P. 463—465.
7. Wagner D., Moulder J., Davis L. Handbook of X-ray Photoelectron Spectroscopy. — N.Y.: Perking-Elmer Corp., 1979. — P. 234.
8. Jun Y.-W., Huh Y.-M., Choi J. et al. Nanoscale Size Effect of Magnetic Nanocrystals and Their Utilization for Cancer Diagnosis via Magnetic Resonance Imaging // J. Am. Chem. Soc. — 2005. — 127. — P. 5732—5733.
9. Gubala V., Le Guevel X., Nooney R. et al. A Comparison of Mono and Multivalent Linkers and Their Effect on the Colloidal Stability of Nanoparticle and Immunoassays Performance // Talanta. — 2010. — 81. — P. 1833—1839.
10. Yannan Zhao, Jing Zhang, Xia Wang et al. The Osteogenic Effect of Bone Morphogenetic Protein-2 on the Collagen Scaffold Conjugated with Antibodies // J. of Controlled Release. — 2010. — 141. — P. 30—37.
11. Smith E.A., Wanat M.J., Cheng Yu. et al. Formation, Spectroscopic Characterization, and Application of Sulfhydryl- Terminated Alkanethiol Monolayers for the Chemical Attachment of DNA onto Gold Surfaces // Langmuir. — 2001. — 17. — P. 2502—2507.

Текст статтіРозмір
2012-1-23.pdf378.84 КБ

Тематичні розділи журналу

,