Выделение высших базидиомицетов, перспективных продуцентов биологически активных веществ, в чистую культуру и их длительное хранение

Проведен подбор методов и условий для выделения в чистую культуру и длительного хранения трех видов высших базидиомицетов Schizophyllum commune Fr., Laetiporus sulphureus (Bull.) Murrill и Polyporus squamosus Huds.: Fr., которые на сегодня являются перспективными продуцентами биологически активных веществ. Установлено, что наиболее эффективной методикой перенесения штаммов в чистую культуру для S. commune было выделение из спорового материала, а для L. sulphureus и P. squamosus – из базидиом. С использованием подобранных наиболее эффективно методов из природных условий были изолированы 13 штаммов S.commune, 13 штаммов L. sulphureus и 7 штаммов P. squamosus. Предложены условия длительного хранения штаммов. Для культур исследованных видов наилучшими для хранения в течение 12 месяцев и более являются агаризованное пивное сусло и температура + 4 °С. При необходимости хранения сроком до 6 месяцев также возможно использование картофельно-глюкозной агаризованной среды. Предложенные методы позволяют хранить штаммы в условиях производства без потери биологических и технологических свойств.

Год издания: 
2013
Номер: 
3
УДК: 
УДК 582.284.3
С. 12–17. Іл. 4. Табл. 1. Бібліогр.: 22 назви.
Литература: 

1. Ch. Hobbs, Medicinal Mushrooms: An exploration of Tradition, Healing and Culture. Santa Cruz: Botanica Press, 1995, 251 p.
2. K. Lorenzen and T. Anke, “Basidiomycetes as a Source for New Bioactive Natural Products”, Cur. Organic Chemistry, vol. 2, pp. 329—364, 1998.
3. S.P. Wasser et al., “Medicinal Mushrooms: Past, Present and Future”, Ukr. Bot. J., vol. 5, pp. 499—524, 2002.
4. Эффективность антиоксидантного действия различных концентраций спиртового экстракта из мицелия каротинсинтезирующего гриба Laetiporus sulpphureus / Т.С. Гвоздкова, О.Н. Сорока, Т.В. Черноок, М.В. Залашко // Микробиология и биотехнология ХХІ столетия: Матер. Междунар. конф., посвященной 100-летию со дня рождения С.А. Самцевича, 22—24 мая 2002 г., Минск. — Минск, 2002. — С. 24—25.
5. H.S. Hwang and J. W. Yun, “Hypoglycemic effect of polysaccharides produced by submerged mycelial culture of Laetiporus sulphureus on streptozotocin-induced diabetic rats”, Biotech. Bioprocess Eng., vol. 15, pp. 173—181, 2010.
6. U. Lindequist et al., “The Pharmacological Potential of Mushrooms”, CAM., vol. 2, no. 3, pp. 285—299, 2005.
7. Q. Shen et al., “Potential pharmaceutical resours of the Qinling Mountain in central China: medicinal fungi”, Front. Biol. China, vol. 4, no. 1, pp. 89—93, 2009.
8. M.J. Lear et al., “Laetirobin from the Parasitic Growth of Laetiporus sulphureus on Robinia pseudoacacia”, J. Nat. Prod., vol. 72, no. 11, pp. 1980—1987, 2009.
9. A. Mlinarič et al., “Screening of selected wood-damaging fungi for the HIV-1 reverse transcriptase ingibitors”, Acta Pharm., vol. 55, pp. 69—79, 2005.
10. T. Okamura et al., “Cultural characteristics of Laetiporus sulphureus, producing an anti-thrombin substance”, Bull. Mukogawa Women’s Univ. Nat. Sci., vol. 48, pp. 65—68, 2000.
11. Бабицкая В.Г.,Щерба В.В., Гвоздкова Т.С. Новые биологически активные добавки на основе глубинного мицелия базидиальных игрибов // Успехи медицинской микологии. — М.: Нац. академия микологии, 2006. — 6. — С. 178—181.
12. Состав и биологическая ценность мицелиальной биомассы гриба Polyporus squamosus A-42 / В.Ф. Бекер, М.С. Уртане, С.В. Васильева и др. // Транспортные и обменные процессы в кишечнике животных / Отв. ред. А.Р. Вальдман. — Рига: Зинатне, 1984. — С. 183— 194.
13. S.V. Reshetnikov et al., “Higher Basidiomycota as a source of antitumor and immunostimulating polysaccharides”, Int. J. Med. Mushrooms, vol. 3, pp. 361—394, 2001.
14. M. Yassin et al., “Submerged cultured mycelium extracts of higher basidiomycetes mushrooms selectively inhibit proliferation and induce differentiation of K562 humman chronic myelogenous leukemia cells”, Ibid, vol. 5, pp. 261— 276, 2003.
15. Бухало А.С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. — К.: Наук. думка, 1988. — 144 с.
16. Методы экспериментальной микологии: Справочник / И.А. Дудка, С.П. Вассер, И.А. Элланская и др. — К.: Наук. думка, 1982. — 561 с.
17. L. Sigler et al., “Diagnostic difficulties caused by a nonclamped Schizophyllum commune isolate in a case of fungus ball of the lung”, J. Clin. Microbiol., vol. 33, pp. 1979—1983, 1995.
18. J. D.Rihs et al., “Brain abscess caused by Schizophyllum commune: an emerging Basidiomycete pathogen”, J. Clinical Microbiol., no. 34, pp. 1628—1632, 1996.
19. Сатон Д., Фотергилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно патогенных грибов / Пер. с англ. — М.: Мир, 2001. — 486 с.
20. R. Kano et al., “First Report on Schizophyllum commune from a Dog”, J. Clinical Microbiol., vol. 40, no. 9, pp. 3535—3537, 2002.
21. A. Dikin et al., “Biological Control of Seedborne Pathogen of Oil Palm, Schizopyllum commune Fr. with Antagonistic Bacteria”, Int. J. Agri. Biol., vol. 5., no. 4., pp. 507—512, 2003.
22. T. Schaap and G. Simchen, “Genetic control of recombination affecting mating factors in a population of Schizophyllum and it’s relation to inbreeding”, Genetics, vol. 68, pp. 67—75, 1971.
23. Методы очистки мицелиальных грибных культур от бактериального загрязнения // Микология и фитопатология. — 2003. — 37, № 4. — С. 92—95.

Транслитерированый список литературы: 

1. Ch. Hobbs, Medicinal Mushrooms: An exploration of Tradition, Healing and Culture. Santa Cruz: Botanica Press, 1995, 251 p.
2. K. Lorenzen and T. Anke, “Basidiomycetes as a Source for New Bioactive Natural Products” , Cur. Organic Chemistry, vol. 2, pp. 329–364, 1998.
3.S.P. Wasser et al., “Medicinal Mushrooms: Past, Present and Future”, Ukr. Bot. J., vol. 5, pp. 499–524, 2002.
4.Ėffektivnost' antioksidantnogo deĭstvii͡a razlichnykh konsentrasiĭ spirtovogo ėkstrakta iz mit͡selii͡a karotinsintezirui͡ushchego griba Laetiporus sulpphureus / T.S. Gvozdkova, O.N. Soroka, T.V. Chernook, M.V. Zalashko // Mikrobiologii͡a i biotekhnologii͡a KhKhІ stoletii͡a: Mater. Mezhdunar. konf., posvi͡ashchennoĭ 100-letii͡u so dni͡a rozhdenii͡a S.A. Samt͡sevicha, 22–24 mai͡a 2002 g., Minsk. – Minsk, 2002. – S. 24–25.
5. H.S. Hwang and J. W. Yun, “Hypoglycemic effect of polysaccharides produced by submerged mycelial culture of Laetiporus sulphureus on streptozotocin-induced diabetic rats”, Biotech. Bioprocess Eng., мol. 15, pp. 173–181, 2010.
6. U. Lindequist et al., “The Pharmacological Potential of Mushrooms”, CAM., vol. 2, no. 3,pp. 285–299, 2005.
7. Q. Shen et al., “Potential pharmaceutical resours of the Qinling Mountain in central China: medicinal fungi”, Front. Biol. China, vol. 4, no. 1, pp. 89–93, 2009.
8. M.J. Lear et al., “Laetirobin from the Parasitic Growth of Laetiporus sulphureus on Robinia pseudoacacia”, J. Nat. Prod., vol. 72, no. 11, pp. 1980–1987, 2009.
9. A. Mlinarič et al., “Screening of selected wood-damaging fungi for the HIV-1 reverse transcriptase ingibitors”, Acta Pharm., vol. 55, pp. 69–79, 2005.
10. T. Okamura et al., “Cultural characteristics of Laetiporus sulphureus, producing an anti-thrombin substance”, Bull. Mukogawa Women’s Univ. Nat. Sci., vol. 48, pp. 65–68, 2000.
11. Babit͡skai͡a V.G.,Shcherba V.V., Gvozdkova T.S. Novye biologicheski aktivnye dobavki na osnove glubinnogo mit͡selii͡a bazidial'nykh gribov. Uspekhi medit͡sinskoĭ mikologii. – M.: Nat͡s. akademii͡a mikologii, 2006. – 6. – S. 178–181.
12. Sostav i biologicheskai͡a t͡sennost' mit͡selial'noĭ biomassy griba Polyporus squamosus A-42 / V.F. Beker, M.S. Urtane, S.V. Vasil'eva i dr. // Transportnye i obmennye prot͡sessy v kishechnike zhivotnykh / Otv. red. A.R. Val'dman. – Riga: Zinatne, 1984. – S. 183–194.
13. S.V. Reshetnikov et al., “Higher Basidiomycota as a source of antitumor and immunostimulating polysaccharides”, Int. J. Med. Mushrooms, vol. 3, pp. 361–394, 2001.
14. M. Yassin et al., “Submerged cultured mycelium extracts of higher basidiomycetes mushrooms selectively inhibit proliferation and induce differentiation of K562 humman chronic myelogenous leukemia cells”, Ibid, vol. 5, pp. 261–276, 2003.
15. Bukhalo A.S. Vysshie s"edobnye bazidiomit͡sety v chistoĭ kul'ture. – Kiev: Nauk. dumka, 1988. – 144 s.
16. Metody ėksperimental'noĭ mikologii: Spravochnik / I.A. Dudka, S.P. Vasser, I.A. Ėllanskai͡a i dr. – K.: Nauk. dumka, 1982. – 561 s.
17. L. Sigler et al., “Diagnostic difficulties caused by a nonclamped Schizophyllum commune isolate in a case of fungus ball of the lung” , J. Clin. Microbiol., vol. 33, pp. 1979–1983, 1995.
18. J. D.Rihs et al., “Brain abscess caused by Schizophyllum commune: an emerging Basidiomycete pathogen”, J. Clinical Microbiol., no. 34, pp. 1628–1632, 1996.
19. Saton D., Fotergill A., Rinal'di M. Opredelitel' patogennykh i uslovno patogennykh gribov / Per. s angl. – M.: Mir, 2001. – 486 s.
20. R. Kano et al., “First Report on Schizophyllum commune from a Dog”, J. Clinical Microbiol., vol. 40, no. 9, pp. 3535–3537, 2002.
21. A. Dikin et al., “Biological Control of Seedborne Pathogen of Oil Palm, Schizopyllum commune Fr. with Antagonistic Bacteria”, Int. J. Agri. Biol., vol. 5., no. 4., pp. 507–512, 2003.
22. T. Schaap and G. Simchen, “Genetic control of recombination affecting mating factors in a population of Schizophyllum and it’s relation to inbreeding”, Genetics, vol. 68, pp. 67–75, 1971.
23. Ershova E.I͡U., Efremenkova O.V. Metody ochistki mit͡selial'nykh gribnykh kul'tur ot bakterial'nogo zagri͡aznenii͡a // Mikologii͡a i fitopatologii͡a. – 2003. – 37, № 4. – S. 92–95.

Полнотекстовый документSize
2013-3-2.pdf216.57 KB

Тематичні розділи журналу

,